РЕАКЦІЯ ІМУНОКОМПЕТЕНТНИХ КЛІТИН ПЕЧІНКИ НА ПРИГНІЧЕННЯ СИНТЕЗУ ЛЮТЕЇНІЗУЮЧОГО ГОРМОНУ НА 180-Й ДЕНЬ

Автор(и):

Анотація:

Макрофаги печінки відіграють центральну роль у підтримці внутрішньоорганного гомеостазу та в патогенезі її пошкодження. Вони складаються з функціонально відмінних клітинних субпопуляцій. В теперішній час існує інтерес до впливу андрогенів та їх рецепторів на різні клітини печінки та розвиток печінкової патології, а також потенційний вплив кверцетину на фоні пригнічення синтезу андрогенів. Блокада синтезу лютеїнізуючого гормону шляхом введення триптореліну ацетату на 180 добу експерименту спричиняла морфологічні зміни в структурі печінки щурів, зокрема в клітинному, сполучнотканинному та судинному компонентах. Сумарна активність NO-синтаз у печінці зростала, як і концентрація нітритів. Активність аргінази знижувалась. Введення кверцетину призводило до зниження сумарної активності NO-синтаз. Зсув поляризації макрофагів у бік переважання М1 може бути наслідком дисфункції ендотелію внаслідок пригнічення синтезу лютеїнізуючого гормону.

Ключові слова:

печінка макрофаги лютеїнізуючий гормон трипторелін кверцетин щури

Посилання:

1. Bahriy MM, Dibrova VA, editors. Metodyky morfolohichnykh doslidzhen. Vinnytsya: Nova knyha; 2016. 328s. [in Ukrainian]
2. Afifi NA, Ibrahim MA, Galal MK. Hepatoprotective influence of quercetin and ellagic acid on thioacetamide-induced hepatotoxicity in rats. Can J Physiol Pharmacol. 2018 Jun;96(6):624–629. doi: 10.1139/cjpp-2017-0651.
3. Babcock MC, DuBose LE, Witten TL, Stauffer BL, Hildreth KL, et al. Oxidative Stress and Inflammation Are Associated With Age-Related Endothelial Dysfunction in Men With Low Testosterone. J Clin Endocrinol Metab. 2022 Jan 18;107(2):e500–e514. doi: 10.1210/clinem/dgab715.
4. Bizzaro D, Crescenzi M, Di Liddo R, Arcidiacono D, Cappon A, Bertalot T et al. Sex-dependent differences in inflammatory responses during liver regeneration in a murine model of acute liver injury. Clin Sci (Lond). 2018 Jan 25;132(2):255–272. doi:10.1042/CS20171260.
5. Chen T, Zhang X, Zhu G, Liu H, Chen J, Wang Y, He X. Quercetin inhibits TNF-α induced HUVECs apoptosis and inflammation via downregulating NF-kB and AP-1 signaling pathway in vitro. Medicine (Baltimore). 2020 Sep 18;99(38):e22241. doi: 10.1097/MD.0000000000022241.
6. Dagher O, Mury P, Thorin-Trescases N, Noly PE, Thorin E, Carrier M. Therapeutic Potential of Quercetin to Alleviate Endothelial Dysfunction in Age-Related Cardiovascular Diseases. Front Cardiovasc Med. 2021 Mar 30;8:658400. doi: 10.3389/fcvm.2021.658400.
7. Incalza MA, D'Oria R, Natalicchio A, Perrini S, Laviola L, Giorgino F. Oxidative stress and reactive oxygen species in endothelial dysfunction associated with cardiovascular and metabolic diseases. Vascul Pharmacol. 2018 Jan;100:1–19. doi: 10.1016/j.vph.2017.05.005.
8. Lavin Y, Winter D, Blecher-Gonen R, David E, Keren-Shaul H, Merad M, et al. Tissue-resident macrophage enhancer landscapes are shaped by the local microenvironment. Cell. 2014 Dec 4;159(6):1312–26. doi: 10.1016/j.cell.2014.11.018.
9. Liu L, Guo H, Song A, Huang J, Zhang Y, Jin S, et al. Progranulin inhibits LPS-induced macrophage M1 polarization via NF-кB and MAPK pathways. BMC Immunol. 2020 Jun 5;21(1):32. doi: 10.1186/s12865-020-00355-y.
10. Matsytska YeK, Akimov OYe, Mykytenko AO. Influence of corvitin and metformin on biochemical changes in lacrimal glands of rats during water avoidance stress modeling. J.ophthalmol.(Ukraine).2022;3:39–44. doi.org/10.31288/oftalmolzh202233944
11. Mykytenko AO, Akimov OYe, Yeroshenko GA, Neporada KS. Morphological and functional changes of the hepatic vascular bed under the conditions of modeling alcoholic hepatitis. World of medicine and biology. 2021; 3(77): 229–236. doi: 10.26724/2079-8334-2021-3-77-229-236.
12. Varol C, Mildner A, Jung S. Macrophages: development and tissue specialization. Annu Rev Immunol. 2015;33:643–75. doi: 10.1146/annurev-immunol-032414-112220.
13. Xue J, Schmidt SV, Sander J, Draffehn A, Krebs W, Quester I et al. Transcriptome-based network analysis reveals a spectrum model of human macrophage activation. Immunity. 2014 Feb 20;40(2):274–88. doi: 10.1016/j.immuni.2014.01.006.
14. Yelins’ka AM, Akimov OYe, Kostenko VO. Role of AP-1 transcriptional factor in development of oxidative and nitrosative stress in periodontal tissues during systemic inflammatory response. Ukr. Biochem. J. 2019; 91(1): 80–85. doi: 10.15407/ubj91.01.080.
15. Yunna C, Mengru H, Lei W, Weidong C. Macrophage M1/M2 polarization. Eur J Pharmacol. 2020 Jun 15; 877:173090. doi: 10.1016/j.ejphar.2020.173090.

Публікація:

«Світ медицини та біології» Том 19 № 84 (2023) , с. 229-233
УДК 616.36-018.53:615.357-092.9’’180’’

DOI:

https://doi.org/10.26724/2079-8334-2023-2-84-229-233