ОСОБЛИВОСТІ ЗМІНИ ЦИТОКІНОВОГО ПРОФІЛЮ ЗА УМОВ ФОРМУВАННЯ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ПАРОДОНТИТУ ТА ІММОБІЛІЗАЦІЙНОГО СТРЕСУ ТА ЙОГО ФАРМАКОЛОГІЧНА КОРЕКЦІЯ
Експериментальна медицина

ОСОБЛИВОСТІ ЗМІНИ ЦИТОКІНОВОГО ПРОФІЛЮ ЗА УМОВ ФОРМУВАННЯ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ПАРОДОНТИТУ ТА ІММОБІЛІЗАЦІЙНОГО СТРЕСУ ТА ЙОГО ФАРМАКОЛОГІЧНА КОРЕКЦІЯ

Опубліковано 12.04.2023

Автор(и):

П.В. Олекшій
І.Г. Гайдучок
М.М. Регеда-Фурдичко
М.А. Колішецька
С.М. Регеда
С.А. Шнайдер
І.В. Дорош

Анотація:
Дослідження було присвячено вивченню характеру порушень рівня вмісту TNF-α, IL-6 та IL-10 у сироватці крові морських свинок за умов експериментального пародонтиту та іммобілізаційного стресу та оцінити ефективність застосування тіоцетаму. Експериментальні дослідження проводили на 50 морських свинках, яких розподілили на три групи. Визначали концентрацію IL-6, IL-10 та TNF-α в сироватці крові. Експериментальна поєднана патологія супроводжувалася поступовим і достовірним підвищенням у крові вмісту TNF-α та IL-6 з найбільшим ступенем прояву на 15 добу експерименту та значне виснаження протизапального цитокіну, що свідчить про значну перевагу прозапальної активності цитокінового профілю. Введення тіоцетаму позитивно впливало на цитокіновий профіль та сприяло зниженню прозапальної ланки цитокінів та значне підвищення рівня інтерлейкіну-10 за умов експериментального пародонтиту та іммобілізаційного стресу.
Ключові слова:
експериментальний пародонтит іммобілізаційний стрес фактор некрозу пухлин-α інтерлейкін-6 інтерлейкін-10 тіоцетам
Посилання:
  1. Sikirynska DO. Vplyv cherepno-skeletnoyi travmy, uskladnenoyi krovovtratoyu, na funktsionalno-morfolohichni porushennya pechinky u shchuriv z riznoyu stiykistyu do hipoksiyi ta yikh korektsiya. [Abstract of a thesis]. Ternopil, UA; Ternopil National Medical University named after I. Gorbachevsky of the Ministry of Health of Ukraine;2021. 22 p. [in Ukrainian]
  2. Barbato L, Francioni E, Bianchi M, Mascitelli E, Marco LB, Tonelli DP. Periodontitis and bone metabolism. Clinical Cases in Mineral and Bone Metabolism. 2015;12(2):174. DOI: 10.11138/ccmbm/2015.12.2.174.
  3. Demkovych A, Bondarenko Y, Hasiuk PA. Oxidative modification of proteins in the process of experimental periodontitis development. Interventional Medicine and Applied Science. 2017;9(4):218–21. doi: 10.1556/1646.9.2017.28.
  4. Hacker S, Reichel T, Hecksteden A, Weyh C, Gebhardt K, Pfeiffer M, et al. Recovery-stress response of blood-based biomarkers. International Journal of Environmental Research and Public Health. 2021;18(11):5776. doi: 10.3390/ijerph18115776.
  5. Horodetskyy O. The role of prooxidative and antioxidant processes in periodontal tissue in the mechanisms of formation of adrenalin damage of myocardium and experimental periodontitis and their correction with Corvitin. Journal of Education, health and sport. 2019;9(11):269–276. doi: 10.12775/JEHS.2019.09.11.024.
  6. Kinane DF, Stathopoulou PG, Papapanou PN. Periodontal diseases. Nature reviews Disease primers. 2017;3(1):1–4. doi: 10.1038/nrdp.2017.38.
  7. Lys O, Regeda M, Semenciv N, Regeda-Furdychko M, Regeda S. Peculiarities of disorders of nitrogen oxide system in the blood at adrenalin-inducedmyocardial injury in conditions of immobilization stress and their correction by l-arginine. ScienceRise: Pharmaceutical Science. 2021 (4(32), 24–28. doi: https://doi.org/10.15587/2519-4852.2021.238320
  8. Manukyan AL, Grigoryan AS, Hunanyan LS, Harutyunyan HA, Manukyan MV, Mkrtchyan VS, et.al. Alfa2-adrenoblockers attenuate the elevated plasma cholesterol, anxiety levels and restore impaired spatial memory of rats under the chronic noise exposure. Science of The Total Environment. 2020;740:140390. doi: 10.1016/j.scitotenv.2020.140390.
  9. Owen R, Reilly GC. In vitro models of bone remodelling and associated disorders. Frontiers in bioengineering and biotechnology. 2018;6:134. doi: 10.3389/fbioe.2018.00134.
  10. Petit C, Anadon‐Rosinach V, Rettig L, Schmidt‐Mutter C, Tuzin N, Davideau JL, et.al. Influence of psychological stress on non‐surgical periodontal treatment outcomes in patients with severe chronic periodontitis. Journal of periodontology. 2021;92(2):186–95. doi: 10.1002/JPER.20-0105.
  11. Rinčić G, Gaćina P, Virović Jukić L, Rinčić N, Božić D, Badovinac A. Association between Periodontitis and Liver Disease. Acta Clinica Croatica. 2021;60(3):510–8. doi: 10.20471/acc.2021.60.03.22.
  12. Tan J, Zhang M, Hai Z, Wu C, Lin J, Kuang W, et al. Sustained release of two bioactive factors from supramolecular hydrogel promotes periodontal bone regeneration. ACS Nano. 2019;13(5):5616–22. doi: 10.1021/acsnano.9b00788.
  13. Trivedi S, Lal N. Antioxidant enzymes in periodontitis. Journal of Oral biology and Craniofacial Research. 2017;7(1):54–7. doi: 10.1016/j.jobcr.2016.08.001.
  14. Usui M, Onizuka S, Sato T, Kokabu S, Ariyoshi W, Nakashima K. Mechanism of alveolar bone destruction in periodontitis – Periodontal bacteria and inflammation. Japanese Dental Science Review. 2021;57:201–8. doi: 10.1016/j.jdsr.2021.09.005.
  15. Yelinska AM, Kostenko VO. Indicators of oxidative-nitrosative stress in periodontal tissues of rats exposed to local irritation of gums during lipopolysaccharide-induced systemic inflammatory response. World of Medicine and Biology. 2019;3(69):184–187. DOI: 10.26724/2079-8334-2019-3-69-184-187.
Публікація:
«Світ медицини та біології» Том 19 № 84 (2023) , с. 225-229
УДК 616.155.3-097.37.616.314.18-002.4-085