ДО РОЛІ АТФ-ЗАЛЕЖНОГО КАЛІЄВОГО КАНАЛА Kir6.2 ТА ГІПОКСІЯ-ІНДУКОВАНОГО ФАКТОРА-1αВ ПАТОГЕНЕЗІ ПЕНТИЛЕНЕТЕТРАЗОЛОВОГО КІНДЛІНГА
Експериментальна медицина

ДО РОЛІ АТФ-ЗАЛЕЖНОГО КАЛІЄВОГО КАНАЛА Kir6.2 ТА ГІПОКСІЯ-ІНДУКОВАНОГО ФАКТОРА-1αВ ПАТОГЕНЕЗІ ПЕНТИЛЕНЕТЕТРАЗОЛОВОГО КІНДЛІНГА

Опубліковано 30.11.2022

Автор(и):

З. Доганьїгіт
А. Окан
Е. Акьюз
О.Б. Пошивак
М.П. Первак
О.С. Єгоренко
C.Н.А. Хатал

Анотація:
Метою роботи було імуногістохімічне дослідження експресії АТФ-чутливого калієвого (К+) каналу Kir6.2 та гіпоксія-індукованого фактора 1α у дорзальному гіпокампі у кіндлінгових щурів. Кіндлінг відтворювали у 19 щурів шляхом тритижневого введення пентиленететразолу. У 10 щурів групи контролю для забарвлення зрізів мозку застосовували авідин-біотин-пероксидазний метод. Ще у 10 щурів, які складали негативний контроль, зрізи забарвлювали, використовуючи тільки вторинні антитіла. Інтенсивність кольору мозкових відділів контрольної і кіндлінгової груп порівнювали з такою у групи негативного контроля. У щурів пентиленететразоловим кіндлінгом рівень Kir6.2 становив 18,12+0,98 умовних одиниць і перевищував відповідні дані в контролі (7,53+0,72 умовних одиниць) (р<0,001). Експресія гіпоксія-індукованого фактора 1α становила 17,62+0,90 проти 9,77+1,10 умовних одиниць у контролі (p<0,001). Вміст Kir6.2 і гіпоксія-індукованого фактора 1α в лімбічних структурах може бути використано в якості маркерів ефективності експериментальних методів лікування хронічної епілепсії.
Ключові слова:
судоми калієві канали гіпоксія пентиленететразол гіпокамп
Посилання:
  1. Akyüz E, Doğanyiğit Z, Paudel YN, Kaymak E, Yilmaz S, Uner A, et al. Increased ACh-associated immunoreactivity in autonomic centers in PTZ kindling model of epilepsy. Biomedicines. 2020; 8(5):113. doi: 10.3390/biomedicines8050113.
  2. Auzmendi JA, Lazarowski A. Seizures induces hypoxia and hypoxia induces seizures: a perverse relationship that increases the risk of SUDEP. Neurol Disord Epilepsy J. 2020; 3: 135.
  3. Сho HY, Loreti E, Shih MC, Perata P. Energy and sugar signaling during hypoxia. New Phytol. 2021; 229(1): 57–63. doi: 10.1111/nph.16326.
  4. Crowe AR, Yue W. Semi-quantitative determination of protein expression using immunohistochemistry staining and analysis: an integrated protocol. Bio Protoc. 2019; 9(24): e3465. doi: 10.21769/BioProtoc.3465.
  5. Doğanyiğit Z, Okan A, Kaymak E, Pandır D, Silici S. Investigation of protective effects of apilarnil against lipopolysaccharide induced liver injury in rats via TLR 4/HMGB-1/NF-κB pathway. Biomed Pharmacother. 2020; 125: 109967. doi: 10.1016/j.biopha.2020.109967.
  6. Farrell JS, Colangeli R, Dudok B, Wolff MD, Nguyen SL, Jackson J, et al. In vivo assessment of mechanisms underlying the neurovascular basis of postictal amnesia. Sci Rep. 2020; 10: 14992. doi: 10.1038/s41598-020-71935-6.
  7. Fu Q, Sun Z, Zhang J, Gao N, Qi F, Che F, et al. Diazoxide preconditioning antagonizes cytotoxicity induced by epileptic seizures. Neural Regen Res. 2013; 8(11):1000–1006. doi: 10.3969/j.issn.1673-5374.2013.11.005.
  8. Jeon GW, Sheldon RA, Ferriero DM. Hypoxia-inducible factor: role in cell survival in superoxide dismutase overexpressing mice after neonatal hypoxia-ischemia. Korean J Pediatr. 2019; 62(12): 444–449. doi: 10.3345/kjp.2019.00850.
  9. Li Y, Wu L, Yu M, Yang F, Wu B, Lu S, et al. HIF-1α is critical for the activation of notch signaling in neurogenesis during acute epilepsy. Neurol. Sci. 2018; 394: 206–219. doi: 10.4062/biomolther.2019.119.
  10. Long Q, Fan C, Kai W, Luo Q, Xin W, Wang P, et al. Hypoxia inducible factor-1α expression is associated with hippocampal apoptosis during epileptogenesis. 2014; 1590: 20–30. doi: 10.1016/j.brainres.2014.09.028.
  11. Pervak MP. Effects of silver nanoparticles on pentylenetetrazol-induced kindled seizures in rats. Aktualni problemy suchasnoyi medytsyny: Visnyk Ukrayinskoyi medychnoyi stomatolohichnoyi akademiyi. 2019; 19(3 (63)): 146–150.
  12. Thijs RD, Surges R, O'Brien TJ, Sander JW. Epilepsy in adults. Lancet. 2019; 393(10172): 689–701. doi: 10.1016/SO140-6736(18)32596-0.
  13. Tinker A, Aziz Q, Li Y, Specterman M. ATP-sensitive potassium channels and their physiological and pathophysiological roles. Compr Physiol. 2018; 8:1463–1511. doi: 10.1002/cphy.c170048.
  14. van Lanen RHGJ, Melchers S, Hoogland G, Schijns OEMG, van Zandvoort MAMJ, Haeren RHL, et al. Microvascular changes associated with epilepsy: A narrative review. J Cereb Blood Flow Metab. 2021; 41(10): 2492–2509. doi: 10.1177/0271678X211010388.
  15. Yang J, He F, Meng Q, Sun Y, Wang W, Wang C, et al. Inhibiting HIF-1α decreases expression of TNF-α and caspase-3 in specific brain regions exposed kainic acid-induced status epilepticus. Cell Physiol Biochem. 2016; 38(1): 75–82. doi: 10.1159/000438610.
Публікація:
«Світ медицини та біології» Том 18 № 82 (2022) , с. 212-216
УДК 616-092.9:612.825.3