РОЛЬ СУЛЬФІДНОГО АНІОНУ У РОЗВИТКУ ОКСИДАТИВНОГО СТРЕСУ ПЕЧІНКИ ЗА УМОВ ХРОНІЧНОГО АЛКОГОЛЬНОГО ГЕПАТИТУ
Експериментальна медицина

РОЛЬ СУЛЬФІДНОГО АНІОНУ У РОЗВИТКУ ОКСИДАТИВНОГО СТРЕСУ ПЕЧІНКИ ЗА УМОВ ХРОНІЧНОГО АЛКОГОЛЬНОГО ГЕПАТИТУ

Опубліковано 15.06.2022

Автор(и):

А.О. Микитенко
О.Є. Акімов
Г.А. Єрошенко
К.С. Непорада

Анотація:
Патогенез алкогольного гепатиту багатофакторний і є кінцевим результатом складної взаємодії метаболізму етанолу, запалення та імунологічних реакцій. Молекулярні механізми H2S у алкогольному гепатиті не достатньо вивчені, а його захисна роль не доведена. Експерименти виконані на 30 білих статевозрілих безпородних щурах-самцях, вагою 180–220 г. Тварини були розділені на 2 групи: І – контрольна (n=6); ІІ група – тварини, яким моделювали алкогольний гепатит. В гомогенаті печінки щурів визначали активність супероксиддисмутази та каталази, концентрацію малонового диальдегіду, окисно-модифікованих білків та сульфід-аніону, продукцію супероксид-аніону. Зниження концентрації сульфідного аніону на тлі збільшення активності супероксиддисмутази та наявність між ними обернено-пропорційного сильного кореляційного зв’язку свідчить про вплив алкоголю на тіоредоксинову систему, а саме на збільшення експресії білку, що взаємодіє з тіоредоксином стимулюючи реакцію останнього із активними формами кисню. Хронічна алкогольна інтоксикація призводить до розвитку оксидативного стресу в печінці щурів внаслідок збільшення продукції активних форм кисню. Зниження концентрації сульфідного аніону на 28 добу експерименту пов’язано із його використанням в якості антиоксиданта.
Ключові слова:
печінка алкогольний гепатит щури оксидативний стрес сульфідний аніон
Посилання:
  1. Damba T, Zhang M, Buist-Homan M, van Goor H, Faber KN, Moshage H. Hydrogen sulfide stimulates activation of hepatic stellate cells through increased cellular bio-energetics. Nitric Oxide. 2019 Nov 1; 92: 26-33. doi: 10.1016/j.niox.2019.08.004.
  2. Fan HN, Wang HJ, Yang-Dan CR, Ren L, Wang C, Li YF, Deng Y. Protective effects of hydrogen sulfide on oxidative stress and fibrosis in hepatic stellate cells. Mol Med Rep. 2013 Jan; 7(1): 247–53. doi: 10.3892/mmr.2012.1153.
  3. Heo MJ, Kim TH, You JS, Blaya D, Sancho-Bru P, Kim SG. Alcohol dysregulates miR-148a in hepatocytes through FoxO1, facilitating pyroptosis via TXNIP overexpression. Gut. 2019 Apr;68(4):708–720. doi: 10.1136/gutjnl-2017-315123.
  4. Hyun JY, Kim SK, Yoon SJ, Lee SB, Jeong JJ, Gupta H, Sharma SP, Oh KK, Won SM, Kwon GH, Cha MG, Kim DJ, Ganesan R, Suk KT. Microbiome-Based Metabolic Therapeutic Approaches in Alcoholic Liver Disease. Int J Mol Sci. 2022 Aug 6; 23(15): 8749. doi: 10.3390/ijms23158749.
  5. Kim SK, Choe JY, Park KY. Ethanol Augments Monosodium Urate-Induced NLRP3 Inflammasome Activation via Regulation of AhR and TXNIP in Human Macrophages. Yonsei Med J. 2020 Jun;61(6):533–541. doi: 10.3349/ymj.2020.61.6.533.
  6. Mykytenko AO, Akimov OYe, Yeroshenko GA, Neporada KS. Morphological and functional changes of the hepatic vascular bed under the conditions of modeling alcoholic hepatitis. World Of Medicine And Biology. 2021; 3(77): 229–236. doi: 10.26724/2079-8334-2021-3-77-229-236.
  7. Mykytenko AO, Yeroshenko GA. Reaction of hemomicrocirculatory bed of rat liver and changes in the functional state of the nitric oxide cycle under the conditions of modeling alcoholic hepatitis. World Of Medicine And Biology. 2020; 3(73): 194–200. doi: 10.26724/2079-8334-2020-3-73-194-200
  8. Neuman MG, Seitz HK, Teschke R, Malnick S, Johnson-Davis KL, Cohen LB, et al. Viral and Clinical Features of Alcohol- and Non-Alcohol-Induced Liver Injury. Curr Issues Mol Biol. 2022 Mar 16; 44(3): 1294–1315. doi: 10.3390/cimb44030087.
  9. Qu XQ, Chen QF, Shi QQ, Luo QQ, Zheng SY, Li YH, Bai LY, Gan S, Zhou XY. Hepatocyte-Conditional Knockout of Phosphatidylethanolamine Binding Protein 4 Aggravated LPS/D-GalN-Induced Acute Liver Injury via the TLR4/NF-κB Pathway. Front Immunol. 2022 Jul 8;13:901566. doi: 10.3389/fimmu.2022.901566.
  10. Sangineto M, Grander C, Grabherr F, Mayr L, Enrich B, Schwärzler J, et al. Recovery of Bacteroides thetaiotaomicron ameliorates hepatic steatosis in experimental alcohol-related liver disease. Gut Microbes. 2022 Jan-Dec;14(1):2089006. doi: 10.1080/19490976.2022.2089006.
  11. Silva J, Spatz MH, Folk C, Chang A, Cadenas E, Liang J, Davies DL. Dihydromyricetin improves mitochondrial outcomes in the liver of alcohol-fed mice via the AMPK/Sirt-1/PGC-1α signaling axis. Alcohol. 2021 Mar;91:1–9. doi: 10.1016/j.alcohol.2020.10.002.
  12. Stepanov YuM, Didenko VI, Dynnik OB, Konenko IS, Oshmianskaia NYu, Galinsky AA. Association of morphological changes in the liver parenchyma and its rigidity under the conditions of the experimental modeling of alcoholic and toxic hepatitis. Journal of the NAMSU. 2017; 23 (3-4): 196–204.
  13. Villalobos-García D, Hernández-Muñoz R. Lactate-stimulated ethanol oxidation: Revisiting an old hypothesis. Biochem Pharmacol. 2019 Jun;164:283–288. doi: 10.1016/j.bcp.2019.04.012.
Публікація:
«Світ медицини та біології» Том 18 № 81 (2022) , с. 223-226
УДК 616.36-002:615.4:612.08