СУБМІКРОСКОПІЧНІ ЗМІНИ ГЕМОКАПІЛЯРІВ КОРИ НАДНИРКОВИХ ЗАЛОЗ У ДИНАМІЦІ ПІСЛЯ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЇ ТЕРМІЧНОЇ ТРАВМИ
Експериментальна медицина

СУБМІКРОСКОПІЧНІ ЗМІНИ ГЕМОКАПІЛЯРІВ КОРИ НАДНИРКОВИХ ЗАЛОЗ У ДИНАМІЦІ ПІСЛЯ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЇ ТЕРМІЧНОЇ ТРАВМИ

Опубліковано 30.08.2021

Автор(и):

В.В. Кульбіцька
З.М. Небесна
С.Б. Крамар
І.Б. Гетманюк

Анотація:
Метою даного дослідження було встановити субмікроскопічні зміни гемокапілярів надниркових залоз білих щурів в динаміці після експериментальної термічної травми. Експеримент проведено на 36 статевозрілих білих щурах-самцях. Опік ІІб ступеня моделювали під тіопентал-натрієвим наркозом. Субмікроскопічні зміни вивчали на 1, 7, 14 та 21 добу від початку експерименту. Для електронномікроскопічного дослідження забирали невеликі шматочки кори надниркових залоз. Обробку тканин проводили згідно загальноприйнятих методик. Ультратонкі зрізи вивчали в електронному мікроскопі ПЕМ-125К. В ранні терміни після експериментальної термічної травми відбуваються початкові деструктивні зміни складових елементів стінки кровоносних капілярів органу, що проявлялось їх надмірним кровонаповненням, набряком та деструкцією цитоплазми ендотеліоцитів, перицитів, деформацією ядер, нерівномірним потовщенням базальної мембрани. В пізні терміни після опіку, встановлено значні деструктивно-дегенеративні зміни в стінці гемокапілярів кори надниркових залоз, що супроводжувалось нерівномірним потовщенням та гомогенізацією базальної мембрани, пікнозом ядер, деструкцією і фрагментацією органел в цитоплазмі ендотеліоцитів, порушенням фенестрації та зникненням мікропіноцитозних пухирців, що призводить до недостатності трансендотеліального обміну в органі.
Ключові слова:
надниркова залоза ультраструктура гемокапіляра експериментальна опікова травма
Посилання:
  1. Horalskyi LP, Homich VТ, Kononskiy ОІ. Osnovy histolohichnoyi tekhniky i morfofunktsionalni metody doslidzhen u normi ta pry patolohiyi. Zhitomir: ZhNAEY; 2019. 286 s. [in Ukrainian].
  2. Zhurakivska OIa, Zhurakivskyi VM, Dutchak UM, Kulynych HB, Tkachuk YuL. Morfofunktsionalni zminy nadnyrkovykh zaloz u ranni terminy rozvytku streptozototsynovoho tsukrovoho diabetu. Klinichna anatomiia ta operatyvna khirurhiia. 2019;2(18):82–8. doi: 10.24061/1727-0847.18.2.2019.16. [in Ukrainian].
  3. Tkachuk YuL. Morfolohichni zminy hemomikrotsyrkuliatornoho rusla kirkovoi rechovyny nadnyrnykiv pry streptozototsynovomu tsukrovomu diabeti. Eksperymentalna i klinichna medytsyna. 2014(3):135–8. [in Ukrainian].
  4. Barrett LW, Fear VS, Waithman JC, Wood FM, Fear MW. Understanding acute burn injury as a chronic disease. Burns & Trauma. 2019;16;7:23. doi:10.1186/s41038-019-0163-2
  5. Berger I, Werdermann M, Bornstein SR, Steenblock C. The adrenal gland in stress - Adaptation on a cellular level. J Steroid Biochem Mol Biol. 2019;190:198–206. doi: 10.1016/j.jsbmb.2019.04.006.
  6. Hryntsova NB, Romaniuk AM, Bumeister VI, Kiptenko LI, Pernakov MS. Morphofunctional alterations of the adrenal cortex of sexually mature rats under prolonged exposure to heavy metal salts. Reports of Vinnytsia National Medical University. 2019;23(1)54–8. doi:10.31393/reports-vnmedical-2019-23(1)-08
  7. Knyazevich-Chorna TV, Mikhailyuk IO, Rudyak AN, Tarasevych NR. Functional state of the adrenal glands with combination of their morphological reorganization at different stages of a posthypothermic period. Reports of Vinnytsia National Medical University. 2019;23(1):41–5. doi: 10.31393/reports-vnmedical-2019-23(1)-06.
  8. Moroz GA, Kriventsov MA, Kutia SA. Morphofunctional changes in the adrenal glands of juvenile rats systematically exposed to hypergravity. Russian Open Medical Journal. 2018;7: e0401. doi: 10.15275/rusomj.2018.0401
  9. Ogura A, Tsurumi A, Que Y–A, Almpani M, Zheng H, Tompkins RG, et al. Associations between clinical characteristics and the development of multiple organ failure after severe burns in adult patients. Burns. 2019;45(8):1775–82. doi.org/10.1016/j.burns.2019.02.014
  10. Palmieri TL. Transfusion and infections in the burn patient. Surgical infections. 2020;22(1):49–53. doi:10.1089/sur.2020.160
  11. Roshangar L, Soleimani R, Kheirjou R, Reza Ranjkesh M, Ferdowsi Khosroshahi, A. Skin burns: Review of molecular mechanisms and therapeutic approaches. Wounds. 2019;31(12):308–15. doi:10.1038/s41572-020-0145-5
  12. Shaw P, Sharma AK, Kalonia A, Shukla SK. Vascular perfusion: A predictive tool for thermal burn injury. Journal of tissue viability. 2019;29(1):48–50. doi:10.1016/j.jtv.2019.12.002
  13. Tejiram S, Romanowski KS, Palmieri TL. Initial management of severe burn injury. Current opinion in critical care. 2019;25(6):647–52. doi:10.1097/mcc.0000000000000662
  14. Torres MJM, Peterson JM, Wolf SE. Detection of infection and sepsis in burns. Surgical Infections. 2020;22(1):20–7. doi:10.1089/sur.2020.348
  15. Zhang Q-H, Hao J-W, Xiao-Jing J, Guang-Lei L, Zhou M, Yao Y-M. Long-lasting neurobehavioral alterations in burn-injured mice resembling post-traumatic stress disorder in humans. Experimental neurology. 2019;323:113084. doi:10.1016/j.expneurol.2019.113084
Публікація:
«Світ медицини та біології» Том 17 № 78 (2021) , с. 224-228
УДК 616.136.6-091.8-02:616-001.17]-092.9