ЕФЕКТИВНІСТЬ НЕЙРОІНДУКОВАНИХ МЕЗЕНХІМАЛЬНИХ СТОВБУРОВИХ КЛІТИН ДЛЯ РЕКОНСТРУКЦІЇ ДЕФЕКТІВ СІДНИЧНОГО НЕРВУ ЩУРІВ
Експериментальна медицина

ЕФЕКТИВНІСТЬ НЕЙРОІНДУКОВАНИХ МЕЗЕНХІМАЛЬНИХ СТОВБУРОВИХ КЛІТИН ДЛЯ РЕКОНСТРУКЦІЇ ДЕФЕКТІВ СІДНИЧНОГО НЕРВУ ЩУРІВ

Опубліковано 23.12.2020

Автор(и):

В. O. П’ятикоп
Н.I. Завгородня
В.Ю. Калюжка
О.A. Щегельска
O.O. Гелетка
M.A. Маркевич

Анотація:
Пошкодження периферичних нервів є частою патологією, що має велике соціально–економічне значення. Метою дослідження було вивчення регенеративного потенціалу трансплантованих біодеградуємих фібрінових матриксов, заповнених нейроіндукованими мезенхімальними стовбуровими клітинами, для відновлення пошкоджених периферичних нервів у щурів і оцінки ступеня анатомічної та функціональної цілісності. Дослідження проводилося на 48 самках щурів лінії WAG у віці 3–4 місяців (250±50 г), які були розділені на 4 групи. Сідничні нерви всіх щурів перетинали з утворенням дефекту розміром 10 мм і потім відновлювали з використанням аутотрансплантатів, безклітинних фібрінових матриць і фібринових матриць заповнених нейроіндукованими мезенхімальними стовбуровими клітинами. Функціональні, електрофізіологічні тести та гістологічна оцінка проводилися для аналізу функціонального і анатомічного відновлення протягом 2 місяців. Було показано, що використання нейроіндукованих мезенхімальних стовбурових клітин для відновлення функції периферичного нерва після його пошкодження з утворенням дефекту великого розміру є ефективним методом за даними функціональних, електрофізіологічних, гістологічних результатів.
Ключові слова:
мезенхімальні стовбурові клітини сідничний нерв фібринові матриці
Посилання:
  1. Ashraf R, Sofi HS, Beigh MA, Sheikh FA. Recent trends in peripheral nervous regeneration using 3D biomaterials. Tissue and Cell. 2019; 59:70–81. doi:10.1016/j.tice.2019.06.003
  2. Belanger K, Dinis TM, Taourirt S, Vidal G, Kaplan DL, Egles C. Recent Strategies in Tissue Engineering for Guided Peripheral Nerve Regeneration. Macromol Biosci. 2016; 16(4):472–481. doi:10.1002/mabi.201500367
  3. Brooks DN, Weber RV, Chao JD, Rinker BD, Zoldos J, Robichaux MR, et al. Processed nerve allografts for peripheral nerve reconstruction: a multicenter study of utilization and outcomes in sensory, mixed, and motor nerve reconstructions. Microsurgery. 2012; 32(1):1–14.
  4. Gairbairn NG, Meppelink AM, Ng–Glazier J, Randolph MA, Winograd JM. Augmenting peripheral nerve regeneration using stem cells: A review of current opinion. World J Stem Cells. 2015; 11–26. doi: 10.4252/wjsc.v7.i1.11
  5. Jung Y, N1. Jung Y, Ng JH, Keating CP, et al. Comprehensive evaluation of peripheral nerve regeneration in the acute healing phase using tissue clearing and optical microscopy in a rodent model. PLoS One. 2014; 9(4). doi:10.1371/journal.pone.0094054
  6. Korus L, Ross DC, Doherty CD, Miller TA. Nerve transfers and neurotization in peripheral nerve injury, from surgery to rehabilitation. Journal of Neurology, Neurosurgery and Psychiatry. 2016; 87:188–97. doi: 10.1136/jnnp-2015-310420
  7. Ladak A, Olson J, Tredget EE, Gordon T. Differentiation of mesenchymal stem cells to support peripheral nerve regeneration in a rat model. Exp.Neurology. 2011; 228:22–252.
  8. Lin Y, Manzano M, Gupta G, Ranjan N. Nerve Allografts and Conduits in Peripheral Nerve Repair. Hand clinics. 2013; 29:331–48.
  9. Pyatikop VA, Mohammad AM, Shchegelskaya EA, Kutovoy IO, Gubina–Vakulik GI. Migration features of labeled bone marrow mesenchymal stem cells in rats with modeled Parkinson–like syndrome. Ukrainian neurosurgical journal. 2012; 3:42–8.
  10. Pyatykop V, Kaliuzhka V, Shchegelska O, Markevych M. Efficacy of fibrin matrix with neuroinduced mesenchymal stem cells transplantation for restoration sciatic nerve function after its complete rupture in rats. Inter Collegas. 2019; 6(3). doi: 10.35339/ic.6.3.168-173
  11. Radtke C, Kocsis JD. Peripheral nerve injuries and transplantation of olfactory ensheathing cells for axonal regeneration and remyelination: Fact or fiction? Int J Mol Sci. 2012; 13(10):12911–24.
  12. Sarikcioglu L, Demirel BM. Walking track analysis: an assessment method for functional recovery after sciatic nerve injury in the rat. Morphologia. 2009; 68:1–7.
  13. Torres RY, Miranda GE. Epidemiology of Traumatic Peripheral Nerve Injuries Evaluated by Electrodiagnostic Studies in a Tertiary Care Hospital Clinic. Bol Asoc Med P R. 2015; 107:79–84.
  14. Tsymbaliuk VI, Petriv TI, Medvediev VV, Tatarchuk MM, Draguntsova NG, Vasyliev RG. Efficiency of peripheral nerve gaps restoration by different types of tissue engineering constructs according to electromyography: experimental study. Ukrainian neurosurgical journal. 2017; 4:60–6.
  15. Tsymbaliuk VI, Petriv TI, Molotkovets VY, Vasyliev RG, Tatarchuk MM, Burkush II. Development of walking track device for functional recovery analysis after experimental sciatic nerve injury. World of medicine and biology. 2017; 3:157–60.
Публікація:
«Світ медицини та біології» Том 17 № 75 (2021) , с. 210-214
УДК 606:612.591.1