ПОКАЗНИКИ КЛІТИННОГО ЦИКЛУ І ФРАГМЕНТАЦІЇ ДНК КЛІТИН СЛИЗОВОЇ ОБОЛОНКИ ТОНКОЇ КИШКИ ЧЕРЕЗ 14, 21 ТА 30 ДІБ ПІСЛЯ ОПІКУ ШКІРИ НА ФОНІ ПОПЕРЕДНЬОЇ ІНФУЗІЇ РОЗЧИНІВ ЛАКТОПРОТЕЇНУ З СОРБІТОЛОМ АБО HAES-LX 5%

Автор(и):

Анотація:

При аналізі показників клітинного циклу і фрагментації ДНК клітин слизової оболонки тонкої кишки щурів у пізні терміни після термічного опіку шкіри 2-3 ступеню, площею 21-23 % поверхні тіла, на фоні попереднього застосування інфузійних розчинів встановлено, що “лактопротеїну з сорбітолом” або HAES-LX-5% позитивно впливають на показники клітинного циклу: через 14 діб показники S-фази і індексу проліферації виявились збільшеними у порівнянні із аналогічними в групі опік + 0,9 % розчин NaCl в цей же термін; через 21 добу показники S-фази і індексу проліферації цих двох груп були суттєво вищими від аналогічних показників в групи опік + 0,9 % розчин NaCl і одночасно показники інтервалу SUB-G0G1 в обох групах виявились нижчими від аналогічних показників в групі де використовувався 0,9 % розчин NaCl на фоні опіку. Через 30 діб в групі опік + HAES-LX-5% всі показники клітинного циклу не мають достовірних або тенденцій відмінностей порівняно з аналогічними показниками в групі без опікового ушкодження, а при використанні “лактопротеїну з сорбітолом” показники фази G0G1 та блоку проліферації виявились достовірно нижчими від показників у групі без опіку шкіри.

Ключові слова:

клітинний цикл ДНК цитометрія тонка кишка щури термічний опік шкіри “лактопротеїн з сорбітолом” HAES-LX 5%

Посилання:

1. Béchir M, Puhan MA, Fasshauer M, Schuepbach RA, Stocker R, Neff TA. Early fluid resuscitation with hydroxyethyl starch 130/0.4 (6%) in severe burn injury: a randomized, controlled, double-blind clinical trial. Crit. Care, 2013; 17(6): R299.
2. Carter EA, Udall JN, Kirkham SE, Walker WA. Thermal injury and gastrointestinal function. I. Small intestine nutrient absorption and DNA synthesis. J. Burn. Care. Rehab., 1986; 7: 469-474.
3. Cherkasov EV. Strukturni zminy` ty`musa pry` ekspery`mental`nij opikovij xvorobi u shhuriv za umov yiyi likuvannya shlyaxom vnutrishn`ovennoyi infuziyi HAES-LX-5%. Ukrayins`ky`j medy`chny`j al`manax, 2012; 15(3): 225-230. (in Ukraine)
4. Clark JA, Coopersmith CM. Intestinal crosstalk – a new paradigm for understanding the gut as the “motor” of critical illness. Shock (Augusta, Ga), 2007; 28(4): 384-393.
5. De Jong PR, González-Navajas JM, Jansen NJG. The digestive tract as the origin of systemic inflammation. Crit.Care,2016; 20(1): 279.
6. Earley ZM, Akhtar S, Green SJ, Naqib A, Khan O, Cannon AR, Choudhry MA. Burn Injury Alters the Intestinal Microbiome and Increases Gut Permeability and Bacterial Translocation. PLoS ONE, 2015; 10(7): e0129996.
7. Gavrylyuk AO, Galunko GM, Volkov AO, Shapoval OM. Gistologichni zminy v tonkij kyshci v pizni stadiyi opikovoyi xvoroby pry korekciyi infuzijny`my` rozchy`namy`. Visnyk morfologiyi, 2017; 23(2): 226-231. (in Ukraine)
8. Grimes L, Doyle A, Miller AL, Pyles RB, Olah G, Szabo C. Intraluminal Flagellin Differentially Contributes to Gut Dysbiosis and Systemic Inflammation following Burn Injury. PLoS ONE, 2016; 11(12): e0166770.
9. Gunas I, Dovgan I, Masur O. Method of thermal burn trauma correction by means of cryoinfluence. 1997; Abstracts are presented in zusammen mit der Polish Anatomical Society with the participation of the Association des Anatomistes Verhandlungen der Anatomischen Gesellschaft, Olsztyn (р. 105). Jena – München : Der Urban & Fischer Verlag.
10. Gunas IV, Kondraczkyj BO, Nurmetova IK, Dzevulska IV, Kovalchuk OI, Cherkasov YeV. Dynamika zmin rivnya endogennoyi intoksykaciyi v organizmi shhuriv protyagom misyacya pislya opiku shkiry II-III stupenya, ploshheyu 21-23% poverxni tila ta yiyi korekciya infuzijnymy rozchynamy, laktoproteyinom z sorbitolom ta HAES-LX-5 %. Ukrayinskyj morfologichnyj almanax, 2012; 10(4): 29-34. (in Ukraine)
11. Ikeda H, Suzuki Y, Suzuki M, Koike M, Tamura T, Tong J. Apoptosis is a major mode of cell death caused by ischaemia and ischaemia/reperfusion injury to the rat intestinal epithelium. Gut, 1998; 42: 530-537.
12. Ismailova LI, Guterova LD. Rol kishechnoy mikrofloryi v patogeneze ozhogovoy bolezni. Zdravoohranenie Tadzhikstana, 2008; 5: 97-98. (in Russian)
13. Jeschke G, Gauglitz GG, Kulp GA, Finnerty CC, Williams FN, Kraft R. Long-Term Persistance of the Pathophysiologic Response to Severe Burn Injury. PLoS ONE, 2011; 6(7): e21245.
14. Kozhemyakin YuM, Xromov OS, Boldyryeva NU, Dobrelya NV, Sajfetdinova GA. Naukovo-praktychni rekomendaciyi z utrymannya laboratornyx tvaryn ta roboty z nymy. 2017; K. : Interservis. (in Ukraine)
15. Lee MO. Determination of the surface area of the white rat with its application to the expression of metabolic results. Am. J. Physiol., 1989; 24: 1223.
16. Makarova OI, Chajkovskyj YuB. Osoblyvosti ul`trastrukturnyx zmin v respiratornomu viddili legen shhuriv u viddalenyj period pislya termichnoyi travmy za umov yiyi korekciyi koloyidno-giperosmolyarnym infuzijnym rozchynom HAES-LX-5%. Svit medycyny`ta biologiyi, 2014; 4(46): 115-120. (in Ukraine)
17. Meylanova RD, Magomedov MA. Otsenka mikrotsirkulyatornogo rusla bryizheyki tonkoy kishki kryis metodom vitalnoy mikroskopii pri korrektsii termicheskogo ozhogovogo shoka perftoranom.Sovremennyie naukoemkie tehnologii,2005;6:37-38.(in Russian)
18. Regas FC, Ehrlich HP. Elucidating the vascular response to burns with a new rat model. J. Trauma, 1992; 32(5): 557-563.
19. Semenenko AI, Kondraczkyj BO, Yakovlyeva OO, Sheremeta AV, Xodakivska OL, Petrova GD. Vplyv laktoproteyinu z sorbitolom ta HAES-LX-5% na dynamiku deyakyx pokaznykiv funkcionuvannya pechinky pry opikovij xvorobi u shhuriv. Visnyk morfologiyi, 2010; 16(2): 363-365. (in Ukraine)
20. Shano VP, Grin VK, Fistal EYa, Miminoshvili OI, Zayats YuV. Ozhogovyiy shok. 2006; Donetsk : Yugo-Vostok. (in Russian)
21. Stefanov OV. Doklinichni doslidzhennya likarskih zasobiv. Metodichni rekomendatsiyi. 2001; Kiyiv: Avitsena. (in Ukraine)
22. Szczesny B, Brunyánszki A, Ahmad A, Oláh G, Porter C, Toliver-Kinsky T. Time-Dependent and Organ-Specific Changes in Mitochondrial Function, Mitochondrial DNA Integrity, Oxidative Stress and Mononuclear Cell Infiltration in a Mouse Model of Burn Injury. PLoS ONE, 2015; 10(12): е0143730.
23. Yalcin AD, Bisgin A, Erbay RH, Oguz O, Demir S, Yilmaz M. Trimetazidine effect on burn-induced intestinal mucosal injury and kidney damage in rats. International Journal of Burns and Trauma, 2012; 2(2): 110-117.

Публікація:

«Світ медицини та біології» Том 14 № 63 (2018) , с. 104-108
УДК (616.341:611.018.1):616.5-001.37

DOI:

https://doi.org/10.26724/2079-8334-2017-4-62-104-108