ХАРАКТЕРИСТИКА ПЕРЕХІДНОГО ЕПІТЕЛІЮ СЕЧОВОГО МІХУРА ЩУРІВ У НОРМІ ЗА РЕЗУЛЬТАТАМИ МОРФОМЕТРИЧНОГО ТА КЛАСТЕРНОГО АНАЛІЗІВ
Експериментальна медицина

ХАРАКТЕРИСТИКА ПЕРЕХІДНОГО ЕПІТЕЛІЮ СЕЧОВОГО МІХУРА ЩУРІВ У НОРМІ ЗА РЕЗУЛЬТАТАМИ МОРФОМЕТРИЧНОГО ТА КЛАСТЕРНОГО АНАЛІЗІВ

Опубліковано 24.12.2014

Автор(и):

Н.С. Токарук

Анотація:
Використовуючи для кластерного аналізу агломеративний ієрархічний метод та ітераційний метод k-середніх, в клітинному складі перехідного епітелію сечового міхура виділені чотири кластери та визначені морфометричні показники кожного з них. Встановлено, що найменшу частку займають уротеліоцити кластеру 1 (10,96%), а клітини кластерів 2, 3 і 4 відповідно становлять 39,47, 34,21 і 15,35%. Клітини кластера 1 – це найменші за розмірами базальні клітини, які є мало диференційованими, на що вказує їх високе ЯЦВ. Вони виконують роль камбіальних комітованих клітин, які проліферують і відновлюють клітинний склад уротелію. Кластер 4 утворений поверхневими найбільшими уротеліоцитами, що мають найнижче ЯЦВ. Це високо диференційовані парасолькові клітини, які власне утворюють уротеліальних бар’єр. Кластери 2 і 3 формуються клітинами проміжного шару перехідного епітелію. З них, клітини кластера 2 є помірно диференційованими і характеризують початковий етап диференціації уротеліоцитів, а клітини кластера 3 – високо диференційованими і характеризують термінальне диференціювання. Встановлено також, що клітинний склад кластерів 1 і 4, а також 2 і 3 перебувають в певній функціональній рівновазі. Отримана кластерна структура характеризує популяцію уротеліоцитів ПЕ СМ річних щурів-самців у нормі.
Ключові слова:
кластерний аналіз морфометрія перехідний епітелій уротеліоцити сечовий міхур
Посилання:
  1. Oldenderfer M. S. Klasternyj analiz / M. S. Oldenderfer, R. K. Bleshfild // Faktornyj, diskriminantnyj i klasternyj analiz // – M. : Finansy i statistika, - 1989. – S. 139-210.
  2. Halafjan A. A. Statistica 6 : Statisticheskij analiz danih / A. A. Halafjan. – [3-e izd.] // – M. : Binom-Press, - 2007. – 512 s.
  3. Aickin M. Adjusting of multiple testing when reporting reseach results: the Boneferroni vs Holm methods / M. Aickin, H. Gensler // Am J. of Public Health. – 1996. – Vol. 86, № 5. – P. 726−728.
  4. Apodaca G. The uroepithelium: not jast a passive barrier / G. Apodoca // Traffic. – 2004. – № 3. – P.117-128.
  5. Abu Abbas O. Comparisons between data clustering algorithms / O. Abu Abbas // Tha International Arab J. of Information Technology. – 2008. − Vol. 5, № 3. – P. 320−325.
  6. Birder L. Urothelial signaling / L. A. Birder, K.-E. Andersson // Physiol Rev. – 2013. – № 93. – P. 653–680.
  7. Hurst R. E. Bladder defense molecules, urothelial differentiation, urinary biomarkers, and interstitial cystitis / R. E Hurst, R. M Moldwin, S. G Mulholland // Urology. – 2007. − № 69. – P. 17−23.
  8. Hanna-Mitchell A. T. Impact of diabetes mellitus on bladder uroepithelial cells / A. T. Hanna-Mitchell, G. W. Ruiz, F. Danechgari [et al.] // Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. – 2013. – Vol. 304, № 2. – R 84–93.
  9. Khandelwal P. Cell biology and physiology of the uroepithelium / P. Khandelwal, S. N. Abraham, G. Apodaca // Am J Physiol Renal Physiol. – 2009. – Vol. 297, № 6. – F. 1477–1501.
  10. Lavelle J. Protamine sulfate-induced cystitis: a model of selective cytodestruction of the urothelium / J. Lavelle, S. Meyers, R. Ramage [et. al.] // Urology. – 2001. − № 57. – P. 113.
  11. Liang F. X. Cellular basis of urothelial squamous metaplasia: roles of lineage heterogeneity and cell replacement / F. X. Liang, M. C. Bosland, H. Huang [et al.] // J Cell Biol. – 2005. − № 171. – P. 835−844.
  12. Nguyen M. M. Urothelial progenitor cells: regional differences in the rat bladder / M. M. Nguyen, D. K. Lieu, L. A. deGraffenried [et al.] // Cell Prolif. – 2007. − № 40. − P. 157−165.
  13. Shin K. Hedgehog. Wnt feedback supports regenerative proliferation of epithelial stem-cells in bladder / K. Shin, J. Lee, N. Guo [et al.] // Nature. – 2011. − № 472. − P. 110−114.
  14. Tokaruk N. S. Normal urinary bladder urothelial cells morphometric characteristics of a white rat / N. S. Tokaruk // Ukraїns'kij zhurnal klіnіchnoї ta laboratornoї medicini. – 2013. − T. 8, № 1 (d). – S. 133.
  15. Veranic P. Rapid differentiation of superficial urothelial cells after chitosan-induced desquamation / P. Veranic, A. Erman, M. Kerec-Kos [et al.] // Histochem Cell Biol. – 2008. − № 131. – P. 129−139.
Публікація:
«Світ медицини та біології» Том 11 № 48 (2015) , с. 163-167
УДК 591.87+591.462+616-092.9+616-074