англійська українська
Експериментальна медицина

ВПЛИВ ЕКСТРАКТУ ХМЕЛЮ ВУГЛЕКИСЛОТНОГО НА ІНТЕНСИВНІСТЬ РОСТУ ТА РІВЕНЬ АНТИБІОТИКОРЕЗИСТЕНТНОСТІ ТРАНСФОРМАНТНОГО ШТАМУ KLEBSIELLA PNEUMONIAE

Опубліковано 30.06.2026

Автор(и):

Похил С.І.
Національна академія медичних наук України image/svg+xml
https://orcid.org/0000-0002-2298-9652
Казмірчук В.В.
Національна академія медичних наук України image/svg+xml
https://orcid.org/0000-0002-6014-6728
Перетятко О.Г.
Національна академія медичних наук України image/svg+xml
https://orcid.org/0000-0002-4346-9605
Ягнюк Ю.А.
Національна академія медичних наук України image/svg+xml
https://orcid.org/0000-0001-9227-0400
Проценко Л.В.
Polissya Institute of Agriculture of National Academy of Agrarian Sciences of Ukraine, Інститут сільського господарства Полісся Національної академії аграрних наук України image/svg+xml
https://orcid.org/0000-0002-7746-0270
Анотація:
Досліджено вплив екстракту хмелю вуглекислотного на ріст та стійкість до ампіциліну музейного штаму Klebsiella pneumoniae 5055 з набутою експериментальним шляхом плазмідою резистентності до бета-лактамних антибіотиків від штаму Escherichia coli "D". Перенос плазміди антибіотикорезистентності зазначеному штаму підтверджено методом горизонтального гель-електрофорезу, полімеразної ланцюгової реакції у реальному часі та при дослідженні профілю антибіотикочутливості фенотиповими методами. Встановлено, що екстракт хмелю вуглекислотного створював виражену протимікробну дію щодо трансформантного штаму Klebsiella pneumoniae, проте не впливав на рівень його резистентності до ампіциліну. Проаналізувавши дані наших досліджень можна зробити припущення, що інгібуюча дія екстракту хмелю вуглекислотного на ріст бактерій не супроводжувалась антиплазмідним ефектом, оскільки стійкість до бета-лактамів у штаму Klebsiella pneumoniae 5055+рECD була пов’язана саме з отриманням шляхом трансформації in vitro плазміди резистентності до ампіциліну.
Ключові слова:
екстракт хмелю вуглекислотний трансформантний штам Klebsiella pneumoniae протимікробна активність антиплазмідна дія
Посилання:
  1. Abdallah EM, Alhatlani BY, de Paula Menezes R, Martins CH. Back to Nature: Medicinal Plants as Promising Sources for Antibacterial Drugs in the Post-Antibiotic Era. Plants. 2023; 12(17): 3077. https://doi.org/10.3390/plants12173077.
  2. Abdelaziz SM, Aboshanab KM, Yahia IS, Yassien MA, Hassouna NA. Correlation between the Antibiotic Resistance Genes and Susceptibility to Antibiotics among the Carbapenem-Resistant Gram-Negative Pathogens. Antibiotics. 2021; 10(3): 255. https://doi.org/10.3390/antibiotics10030255.
  3. Alav I, Pordelkhaki P, Rodriguez-Navarro J, Neo O, Kessler C, Awodipe RJ, et al. Natural products from food sources can alter the spread of antimicrobial resistance plasmids in Enterobacterales. Microbiology. 2024; 170(8). https://doi.org/10.1099/mic.0.001496.
  4. Buckner MM, Ciusa ML, Piddock LJ. Strategies to combat antimicrobial resistance: anti-plasmid and plasmid curing. FEMS Microbiol Rev. 2018; 42(6): 781-804. https://doi.org/10.1093/femsre/fuy031.
  5. Carbone K, Gervasi F. An Updated Review of the Genus Humulus: A Valuable Source of Bioactive Compounds for Health and Disease Prevention. 2022; 11(24): 3434. https://doi.org/10.3390/plants11243434.
  6. Chub O, Teslenko S, Chub O. Expression of plasmid-mediated resistance genes ESBLs and PMQR among uropathogens, isolated from non-dialysis CKD patients with pyelonephritis. Kidneys. 2022; 11(1):10–18. https://doi.org/10.22141/2307-1257.11.1.2022.354.
  7. Corcione S, De Benedetto I, Shbaklo N, Torsello G, Lupia T, Bianco G, et al. Ceftazidime-Avibactam (C/A) Resistant, Meropenem Sensitive KPC-Producing Klebsiella pneumoniae in ICU Setting: We Are What We Are Treated with? Int J Mol Sci. 2023; 24(5): 4767. https://doi.org/10.3390/ijms24054767.
  8. Fahle A, Bereswill S, Heimesaat MM. Antibacterial effects of biologically active ingredients in hop provide promising options to fight infections by pathogens including multi-drug resistant bacteria. Eur J Microbiol Immunol. 2022; 12(1): 22-30. https://doi.org/10.1556/1886.2022.00006.
  9. Kado CI, Liu ST. Rapid procedure for detection and isolation of large and small plasmids. J Bacteriol. 1981;145(3):1365–1373. doi:10.1128/jb.145.3.1365-1373.1981.
  10. Khaliullina A, Kolesnikova A, Khairullina L, Morgatskaya O, Shakirova D, Patov S, et al. The Antimicrobial Potential of the Hop (Humulus lupulus L.) Extract against Staphylococcus aureus and Oral Streptococci. Pharmaceuticals. 2024; 17(2): 162. https://doi.org/10.3390/ph17020162.
  11. Khrystian G, Torianyk I, Nevmergitscky V. Principles of medicinal (liniment) preparations using in complex therapy of wound infection. In: Theoretical and practical aspects of the development of modern science: the experience of countries of Europe and prospects for Ukraine. Riga (Latvia): Baltija Publishing; 2018. p. 136–151. https://doi.org/10.30525/978-9934-571-30-5_7.
  12. Kincses A, Ghazal TS, Hohmann J. Synergistic effect of phenylpropanoids and flavonoids with antibiotics against Gram-positive and Gram-negative bacterial strains. Pharm Biol. 2024; 62(1): 659–65. https://doi.org/10.1080/13880209.2024.2389105.
  13. Klimek K, Tyśkiewicz K, Miazga-Karska M, Dębczak A, Rój E, Ginalska G. Bioactive Compounds Obtained from Polish "Marynka" Hop Variety Using Efficient Two-Step Supercritical Fluid Extraction and Comparison of Their Antibacterial, Cytotoxic, and Anti-Proliferative Activities In Vitro. Molecules. 2021; 26(8): 2366. https://doi.org/10.3390/molecules26082366.
  14. Kolenc Z, Langerholc T, Hostnik G, Ocvirk M, Štumpf S, Pintarič M, et al. Antimicrobial properties of different hop (Humulus lupulus) genotypes. Plants. 2023; 12(1): 120. https://doi.org/10.3390/plants12010120.
  15. Li Y, Dalabasmaz S, Gensberger-Reigl S, Heymich ML, Krofta K, Pischetsrieder M. Identification of colupulone and lupulone as the main contributors to the antibacterial activity of hop extracts using activity-guided fractionation and metabolome analysis. Food Res Int. 2023; 169: 112832. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2023.112832.
  16. Liu J, Chang W, Pan L, Liu X, Su L, Zhang W, et al. An improved method of preparing high efficiency transformation Escherichia coli with both plasmids and larger DNA fragments. Indian J Microbiol. 2018; 58(4): 448-456. https://doi.org/10.1007/s12088-018-0743-z.
  17. Piasecki B, Biernasiuk A, Ludwiczuk A. Anti-Coccal Activity and Composition of the Essential Oils and Methanolic Extracts Obtained from Brewing Quality Humulus lupulus L. Hop Pellets. Pharmaceuticals. 2023; 16(8): 1098. https://doi.org/10.3390/ph16081098.
  18. Rochelle PA, Fry JC, Day MJ, Bale MJ. An accurate method for estimating sizes of small and large plasmids and DNA fragments by gel electrophoresis. J Gen Microbiol. 1986; 132(1): 53–59. doi:10.1099/00221287-132-1-53.
  19. WHO bacterial priority pathogens list, 2024: Bacterial pathogens of public health importance to guide research, development and strategies to prevent and control antimicrobial resistance. https://www.who.int/news/item/17-05-2024-who-updates-list-of-drug-resistant-bacteria-most-threatening-to-human-health.
Публікація:
«Світ медицини та біології» Том 22 № 96 (2026) , с. 171-174
УДК 579.61 + 615.28:615.32:615.45
DOI:
https://doi.org/10.26724/2079-8334-2026-2-96-171-174