СФІНГОЗИН-1-ФОСФАТ ЯК НОВИЙ ДІАГНОСТИЧНИЙ, ПРОГНОСТИЧНИЙ БІОМАРКЕР РАКУ ПЕРЕДМІХУРОВОЇ ЗАЛОЗИ ТА ЕФЕКТИВНОСТІ ІНТЕНСИВНО-МОДУЛЬОВАНОЇ РАДІОТЕРАПІЇ

Автор(и):

Анотація:

Сфінгозин-1-фосфат бере участь у різних біологічних процесах, включаючи міграцію клітин, проліферацію та загибель клітин. Наша гіпотеза заснована на можливій ролі сфінгозин-1-фосфату як біомаркера несприятливого прогнозу при раку передміхурової залози та ефективності променевої терапії з модульованою інтенсивністю. За системою Томо System пролікований 41 хворий на місцево поширений рак передміхурової залози. Для визначення вільного сфінгозину використовували метод, заснований на екстракції сфінгоїдних основ діетиловим ефіром, нашої модифікації. Встановлено, що рівні сфінгозин-1-фосфату в нормальних тканинах значно вищі порівняно з раком передміхурової залози. Існує значна кореляція між простато-специфічним антигеном плазми та сфінгозин-1-фосфатом пухлинної тканини при раку передміхурової залози. Сфінгозин-1-фосфат синтезується в пухлинній тканині раку передміхурової залози в 2 рази менше, ніж у навколишній пухлинній тканині. Після променевої терапії його рівень у пухлини передміхурової залози збільшується в 3 рази, а в навколишній пухлину тканини в 1,5 раза, що свідчить про розвиток радіаційно-індукованого ефекту свідка. Наші дані є першим свідченням того, що сфінгозин-1-фосфат пухлинної тканини є значним прогностичним маркером смертності від раку передміхурової залози.

Ключові слова:

сфінгозин-1-фосфат рак передміхурової залози променева терапія

Посилання:

1. Komarevtseva ІO, Chebotarova AA. Vplyv zastosuvannya apoptoz-іndukovanykh mezenkhіmalnykh stovburovykh klіtyn na rіven fragmentatsіyi DNK і aktyvnіst systemy sfіngozynu v umovakh eksperymentalnoho modelyuvannya patolohіchnoho protsesu. Medychna ta klіnіchna khіmіya. 2016. 18(1): 19–23.
2. Agrawal R, Dey A, Datta S. Pattern of Radiotherapy Treatment in Low-Risk, Intermediate-Risk, and High-Risk Prostate Cancer Patients: Analysis of National Cancer Database. Cancers (Basel). 2022; 14(22). doi:10.3390/cancers14225503
3. Cheng JC, Bai A, Beckham TH. Radiation-induced acid ceramidase confers prostate cancer resistance and tumor relapse. J Clin Invest. 2013;123(10):4344–4358. doi:10.1172/JCI64791
4. Cozzi S, Ruggieri MP, Alì E. Moderately Hypofractionated Helical Tomotherapy for Prostate Cancer: Ten-year Experience of a Mono-institutional Series of 415 Patients. In Vivo. 2023;37(2):777–785. doi:10.21873/invivo.13141
5. Hara D, Tao W, Schmidt RM. Boosted Radiation Bystander Effect of PSMA-Targeted Gold Nanoparticles in Prostate Cancer Radiosensitization. Nanomaterials. 2022;12(24). doi:10.3390/nano12244440
6. Janneh AH, Kassir MF, Dwyer CJ, Chakraborty P, Pierce JS, Flume PA, et al. Alterations of lipid metabolism provide serologic biomarkers for the detection of asymptomatic versus symptomatic COVID-19 patients. Sci. Rep. 2021;11:14232. doi: 10.1038/s41598-021-93857-7.
7. Janneh AH and Ogretmen B. Targeting Sphingolipid Metabolism as a Therapeutic Strategy in Cancer Treatment. Cancers (Basel). 2022 May; 14(9): 2183. doi: 10.3390/cancers14092183
8. Moradi S, Hashemi B, Bakhshandeh M, Banaei A, Mofid B. Introducing new plan evaluation indices for prostate dose painting IMRT plans based on apparent diffusion coefficient images. Radiat Oncol. 2022;17(1). doi:10.1186/s13014-022-02163-7
9. Nagahashi M, Yamada A, Miyazaki H, Allegood JC, Tsuchida J, Aoyagi T, et. al. Interstitial Fluid Sphingosine-1-Phosphate in Murine Mammary Gland and Cancer and Human Breast Tissue and Cancer Determined by Novel Methods. J Mammary Gland Biol Neoplasia. 2016 Jun; 21(1-2): 9–17. doi: 10.1007/s10911-016-9354-7
10. Ni J, Bucci J, Malouf D, Knox M, Graham P, Li Y. Exosomes in Cancer Radioresistance. Front Oncol. 2019;9. doi:10.3389/fonc.2019.00869
11. Nunes J, Naymark M, Sauer L. Circulating sphingosine-1-phosphate and erythrocyte sphingosine kinase-1 activity as novel biomarkers for early prostate cancer detection. Br J Cancer. 2012;106(5):909-915. doi:10.1038/bjc.2012.14
12. Pustovoit GL, Sarychev, LP, Savchenko RB, Sarychev YV, Ustenko RI, Sukhomlin SA. Anticholinergic burden in aging patients and its role in the development of bladder decompensation. World of Medicine and Biology. 2022; 81(3): 138–142.
13. Sung H, Ferlay J, Siegel RL, Laversanne M, Soerjomataram I, Jemal A, et al. Global Cancer Statistics 2020: GLOBOCAN Estimates of Incidence and Mortality Worldwide for 36 Cancers in 185 Countries. CA Cancer J. Clin. 2021;71:209–249. doi: 10.3322/caac.21660.
14. Wu Y, Liu Y, Gulbins E, Grassmé H. The Anti-Infectious Role of Sphingosine in Microbial Diseases. Cells. 2021;10:1105. doi: 10.3390/cells10051105.
15. Zhang F, Wang L, Li Y. Optimizing mesoderm progenitor selection and three-dimensional microniche culture allows highly efficient endothelial differentiation and ischemic tissue repair from human pluripotent stem cells. Stem Cell Res Ther. 2017;8(1):1-15. doi:10.1186/s13287-016-0455-4

Публікація:

«Світ медицини та біології» Том 19 № 84 (2023) , с. 93-98
УДК 616.61-006:616.65+576.367

DOI:

https://doi.org/10.26724/2079-8334-2023-2-84-93-98