| Анотація |
Пошкодження ендокринних залоз є одним з ключових патогенетичних факторів при опіку шкіри, але продовжують залишатися маловивченими внутрішньо-клітинні механізми впливу опікової хвороби і її терапії на дані органи. У статті представлені результати дослідження вмісту ДНК в клітинах аденогіпофізу, наднирників і тимусу щурів методом проточної ДНК-цитометрії на тлі термічного опіку шкіри і корекції розчинами 0,9% NaCl або лактопротеїну з сорбітолом. Дослідження проведено через 1, 3, 7, 14, 21 і 30 діб після термічного опіку 2-3 ступеня 21-23% поверхні тіла і його корекції. Статистика обробка отриманих результатів проведена в ліцензійному пакеті "STATISTICA 6.1" з використанням непараметричних методів оцінки. На тлі використання 0,9% розчину NaCl в клітинах аденогіпофізу відбувається істотне зниження показників синтетичної S-фази (відсоткове співвідношення фази синтезу ДНК до всіх клітин клітинного циклу) вже з 1 доби експерименту, які відновлювалися до рівня контролю тільки через 21 добу після опіку шкіри. Показник інтервалу SUB-G0G1 (показник фрагментації ДНК) на тлі застосування 0,9% розчину NaCl суттєво збільшується з 3 доби, а зниження даного показника в клітинах аденогіпофізу спостерігали з 14 доби дослідження. У клітинах надниркових залоз на тлі корекції 0,9% розчином NaCl встановлено істотне збільшення показника S-фази з наступним його зниженням починаючи з 3 доби експерименту, а інтервал SUB-G0G1 також підвищувався з 1 доби з подальшим зниженням цього показника. На тлі корекції 0,9% розчином NaCl спостерігається істотне зниження показника S-фази клітин тимусу через 1 добу після опіку шкіри, а на 3 добу спостерігалося збільшення цього показника з його нормалізацією через 14 діб від початку експерименту. Показники інтервалу SUB-G0G1 клітин тимусу були підвищеними починаючи з 1 доби, але вже через 7 діб не відрізнялися від аналогічних показників групи контролю. При застосуванні розчину лактопротеїну з сорбітолом зафіксовано зниження амплітуди показників S-фази і інтервалу SUB-G0G1 клітин аденогіпофізу, наднирників і тимусу, що вказує на цитопротективний ефект даного препарату. Зроблено висновок, що при корекції 0,9% розчином NaCl недостатньо компен-сується пошкодження ДНК ендокринних залоз після термічного опіку шкіри, а застосування лактопротеїну з сорбітолом істотно покращує досліджувані показники вмісту ДНК в цих органах. |
| Список цитованої літератури |
- Kozynets H.P., Osadcha O.I., Boiarska H.M., Kalashnykov V.V. Klinichna efektyvnistʹ preparatu laktoproteyinu sorbitolom u patsiyentiv z hlybokymy ta tryvalymy opikamy [Clinical efficacy of preparation lactoprotein with sorbitol in patients with deep and extended burns]. Klin. Khir., 2008; 9: 31–33. [in Ukrainian]
- Stefanov O.V. Doklinichni doslidzhennya likarskykh zasobiv. Metodychni rekomendatsiyi [Preclinical studies of medicinal products. Guidelines]. 2001, Avicenna, Kiev. [in Ukrainian]
- Archana M., Bastian, Yogesh T.L., Kumaraswamy K.L. Various methods available for detection of apoptotic cells – a review. Indian Journal of Cancer, 2013; 50(3): 274–283.
- Auron M. & Raissouni N. Adrenal insufficiency. Pediatr Rev., 2015; 36(3): 92–102.
- Bjornson Z.B., Nolan G.P., Fantl W.J. Single Cell Mass Cytometry for Analysis of Immune System Functional States. Current Opinion in Immunology, 2013; 25(4): 10.1016/j.coi.2013.07.004.
- Blaisdell L.L, Chace R., Hallagan L.D., Clark D.E.J. A half-century of burn epidemiology and burn care in a rural state. Burn Care Res., 2012; 33(3): 347–353.
- Fan J., Wu J., Wu L.D., Li G.P., Xiong M., Chen X., Meng Q.Y. Effect of parenteral glutamine supplementation combined with enteral nutrition on Hsp90 expression and lymphoid organ apoptosis in severely burned rats. Burns, 2016; 42(7): 1494–1506.
- Fuzaylov G., Anderson R., Knittel J., Driscoll D.N. Global health: burn outreach program. J. Burn Care Res., 2015; 36(2): 306–309.
- Fuzaylov G., Murthy S., Dunaev A., Savchyn V., Knittel J., Zabolotina O., Dylewski M.L., Driscoll D.N. Improving burn care and preventing burns by establishing a burn database in Ukraine. Burns, 2014; 40(5): 1007–1012.
- Gamelli L., Mykychack I., Kushnir A., Driscoll D.N., Fuzaylov G. Targeting burn prevention in Ukraine: evaluation of base knowledge in burn prevention and first aid treatment. G. J. Burn Care Res., 2015; 36(1): 225–231.
- Graves K.K., Faraklas I., Cochran A. Identification of risk factors associated with critical illness related corticosteroid insufficiency in burn patients. J. Burn Care Res., 2012; 33(3): 330–335.
- Gunas I., Dovgan I., Masur O. Method of thermal burn trauma correction by means of cryoinfluence. Verhandlungen der Anatomischen Gesellschaft, zusammen mit der Polish Anatomical Society with the participation of the Association des Anatomistes, Olsztyn 24-27. Mai, 1997. Bestell-Nr.: 258655
- Johnson B.L., Rice T.C., Xia B.T., Boone K.I., Green E.A., Gulbins E., Caldwell C.C. Amitriptyline usage exacerbates the immune suppression following burn injury. Shock (Augusta, Ga.), 2016; 46(5): 541–548.
- Kawase T., Hayama K., Tsuchimochi M., Nagata M., Okuda K., Yoshie H., Burns D.M., Nakata K. Evaluating the safety of somatic periosteal cells by flow-cytometric analysis monitoring the history of DNA damage. Biopreserv Biobank, 2016; 14: 129–137.
- Lee K.H., Lim D., Green T., Greenhalgh D., Cho K. Injury-elicited stressors alter endogenous retrovirus expression in lymphocytes depending on cell type and source lymphoid organ. BMC Immunology, 2013; 14: 2.
- Lee M.O. Determination of the surface area of the white rat with its application to the expression of metabolic results. Am. J. Physiol., 1989; 24: 1223.
- Mosier M.J., Lasinski A.M., Gamelli R.L. Suspected adrenal insufficiency in critically ill burned patients: etomidate-induced or critical illness-related corticosteroid insufficiency? – A review of the literature. J. Burn Care Res., 2015; 36(2): 272–278.
- Osterbur K., Mann F.A., Kuroki K., DeClue A. Multiple Organ Dysfunction Syndrome in Humans and Animals. Journal of Veterinary Internal Medicine, 2014; 28(4): 1141–1151. http://doi.org/10.1111/jvim.12364
- Rani M. & Schwacha M.G. The composition of T-cell subsets are altered in the burn wound early after injury. PLoS ONE, 2017; 12(6): e0179015.
- Regas F.C. & Ehrlich H.P. Elucidating the vascular response to burns with a new rat model. J. Trauma, 1992; 32(5): 557–563.
- Rice T.C., Armocida S.M., Kuethe J.W., Midura E.F., Jain A., Hildeman D.A., Healy D.P., Gulbins E., Caldwell C.C. Burn injury influences the T cell homeostasis in a butyrate-acid sphingomyelinase dependent manner. Cell Immunol., 2017; 313: 25–31.
- Rojas Y., Finnerty C.C., Radhakrishnan R.S., Herndon D.N. Burns: an update on current pharmacotherapy. Expert Opinion on Pharmacotherapy, 2012; 13(17): 2485–2494.
- Toussaint J. & Singer A.J. The evaluation and management of thermal injuries: 2014 update. Clinical and Experimental Emergency Medicine, 2014; 1(1): 8–18.
- Venet F., Plassais J., Textoris J., Cazalis M.A., Pachot A., Bertin-Maghit M., Tissot S. Low-dose hydrocortisone reduces norepinephrine duration in severe burn patients: a randomized clinical trial. Critical Care, 2015; 19(1): 21.
- Vivó C., Galeiras R., del Caz M.D. Initial evaluation and management of the critical burn patient. Med. Intensiva, 2016; 40(1): 49–59.
- Yamamoto Y., Enkhbaatar P., Sakurai H., Rehberg S., Asmussen S., Ito H., Traber D.L. Development of a long-term ovine model of cutaneous burn and smoke inhalation injury and the effects of early excision and skin autografting. Burns : Journal of the International Society for Burn Injuries, 2012; 38(6): 10.1016/j.burns.2012.01.003.
- Zhu X.M., Dong N., Wang Y.B., Zhang Q.H., Yu Y., Yao Y.M., Liang H.P. The involvement of endoplasmic reticulum stress response in immune dysfunction of dendritic cells after severe thermal injury in mice. Oncotarget, 2017; 8(6): 9035–9052.
|
