| Про автора: |
А. О. Дімов, Г. Ф. Степанов |
| Рубрика |
ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНА МЕДИЦИНА |
| Тип статті |
Наукова стаття |
| Анотація |
Метою дослідження було вивчення патофізіологічних механізмів порушення регуляції азотного обміну у тварин після впливу різних доз іонізуючого випромінювання. Щурів-самців лінії Вістар піддавали впливу іонізуючого опромінення. В печінці, крові, скелетному та серцевому м’язах тварин визначали активність аланін- та аспартатамінотрансферази. У сечі та у крові щурів визначали вміст загального азоту та його компонентів. Отримані дані свідчать, що іонізуюче опромінення викликає виражене дозо-залежне пригнічення активності аланін- та аспартатамінотрансферази у мітохондріальних і цитоплазматичних фракціях печінки та серцевого м’яза. Найбільш помітні порушення спостерігались при дозі 5,82 Гр, що свідчить про значне виснаження функціонального потенціалу клітин і розвиток енергетичної недостатності. У скелетному м’язі зниження активності стосувалося переважно мітохондріальної фракції, тоді як цитоплазматичні показники залишалися відносно стабільними, що свідчить про більшу стійкість цієї тканини до радіаційного впливу. У крові відмічалося достовірне підвищення активності трансаміназ, що свідчить про розвиток системного цитолізу і може бути використане як маркер тяжкості радіаційного ураження. Окрім цього, опромінення супроводжувалося зниженням добового діурезу на фоні значного підвищення екскреції загального азоту з сечею та різким зростанням інтенсивності білкового розпаду. Отримані дані свідчать про комплексне ураження обміну речовин і функціонального стану життєво важливих органів під впливом іонізуючого випромінювання. Виявлені зміни можуть бути використані як інформативні біомаркери для ранньої діагностики, прогнозування і моніторингу тяжкості радіаційного ураження та ефективності радіопротекторних заходів. |
| Ключові слова |
тотальне γ-опромінення,іонізуюча радіація,м’язова тканина,печінка,аланінамінотрансфераза,аспартатамінотрансфераза,загальний азот сечі,патофізіологічні механізми |
| Список цитованої літератури |
- Lapovets LE, Lebed GB, Yastremska OO. Klinichna laboratorna diahnostyka. Kyiv: Medytsyna, 2019: 472 [in Ukrainian].
- Nakonechna OA, Bachynskyi RO. Biokhimiia fermentiv. Aspekty medychnoi enzymolohii. Kharkiv, 2020: 48. [in Ukrainian].
- Adewole MA, Omotosho IO, Olanrewaju AO, Adeniyi YC. Cellulose acetate electrophoretic separation of serum and urine proteins in Nigerian children with autism spectrum disorders. Egypt J Med Hum Genet. 2024; 25(1): 105. doi:10.1186/s43042-024-00576-5.
- Apryatin SA. The Neurometabolic Function of the Dopamine–Aminotransferase System. Metabolites. 2025; 15: 21. doi: 10.3390/metabo15010021.
- Baynes J, Dominiczak M. Medical Biochemistry. Elsevier, 2023: 744.
- Chen C, Naveed H, Chen K. Research progress on branched-chain amino acid aminotransferases. Front. Genet. 2023; 14: 1233669. doi: 10.3389/fgene.2023.1233669.
- Dalangin R, Kim A, Campbell RE. The Role of Amino Acids in Neurotransmission and Fluorescent Tools for Their Detection. Int J Mol Sci. 2020; 21(17): 6197. doi: 10.3390/ijms21176197.
- Fukumoto M. Low-Dose Radiation Effects on Animals and Ecosystems Long-Term Study on the Fukushima Nuclear Accident. Singapore: Springer Open, 2020: 259. doi: 10.1007/978-981-13-8218-5.
- Huang R, Liu X, Li H, Zhou Y, Zhou PK. Integrated analysis of transcriptomics and metabolomics reveals p53-associated mechanisms of cellular response to ionizing radiation. Cell Biosci. 2020; 10: 56. doi: 10.1186/s13578-020-00417-z.
- Kappauf K, Majstorovic N, Agarwal S, Rother D, Claaßen C. Modulation of Transaminase Activity by Encapsulation in Temperature‐Sensitive Poly(N‐acryloyl glycinamide) Hydrogels. Chembiochem. 2021; 22(24): 3452–3461. doi: 10.1002/cbic.202100427.
- Ndrepepa G. Aspartate aminotransferase and cardiovascular disease –a narrative review. J Lab Prec Med. 2021; 6. doi: 10.21037/jlpm-20-93.
- Rehman K, Mustafa G, Ayub H, Ullah I, Alam MR, Khan MA. Expression analysis of tumour necrosis factor alpha (TNF-alpha) and alkaline phosphatase in occupational workers exposed to low dose of X-radiation: A case-control study. J Pak Med Assoc. 2020; 70(11): 1887-1896. doi: 10.5455/JPMA.10644.
- Stepanov GF, Vastyanov RS. Involvement of intramuscular pathology at the level of the actomyosin junction into the pathogenetic mechanisms of muscle dysfunctionsin the descendents of irradiated rats. World of Medicine and Biology. 2023;3(85):230-236. doi: 10.26724/2079-8334-2023-3-85-230-236.
- Torres N, Tobón-Cornejo S, Velazquez-Villegas LA, Noriega LG, Alemán-Escondrillas G, Tovar AR. Amino Acid Catabolism: An Overlooked Area of Metabolism. Nutrients 2023; 15: 3378. doi: 10.3390/nu15153378.
- Zhang JD, Zhao JW, Gao LL, Chang HH, Wei WL, Xu JH. Enantioselective synthesis of enantiopure β-amino alcohols via kinetic resolution and asymmetric reductive amination by a robust transaminase from Mycobacterium vanbaalenii. J Biotechnol. 2019; 290: 24-32. doi: 10.1016/j.jbiotec.2018.12.003.
|
| Публікація статті |
«Світ Медицини та Біології» №2(92), 2025 рік
, 169-173 сторінки, код УДК 614.876:616-055.6:577.122:616-092.4 |
| DOI |
10.26724/2079-8334-2025-2-92-169-173 |
