Английский Українська
  • Главная
  • Полезные ссылки
  • О журнале
  • Авторам
  • Редакционная коллегия

  • Статья
    Котик Т. Л.

    МОРФОМЕТРИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ ПАРЕНХИМЫ ПОДНИЖНЕЧЕЛЮСТНОЙ ЖЕЛЕЗЫ ИНТАКТНЫХ КРЫС С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ МЕТОДОВ МНОГОМЕРНОЙ СТАТИСТИКИ


    Об авторе: Котик Т. Л.
    Рубрика ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ МЕДИЦИНА
    Тип статьи Научная статья.
    Аннотация С использованием морфометрии и методов многомерной статистики, исследованы серомукоциты и выводные протоки поднижнечелюстной железы интактных крыс. С помощью кластерного анализа выделены три кластера клеток концевых отделов, которые характеризуют соответствующие фазы секреторного цикла. Установлено, что серомукоциты, метрические параметры которых изменяются в течение секреторного цикла, перемещаются из кластера в кластер: из кластера 1 во 2-й – при накоплении определенного количества первичных продуктов; из кластера 2 в 3-й – после образования достаточного количества секрета вследствие его синтеза и созревания; из кластера 3 в 1-й – после выделения секрета. Эти процессы протекают плавно и параллельно. В то же время, доля клеток, которые выделили секрет и поглощают продукты для синтеза (клетки кластера 1), соответствует доле клеток, которые готовы выделению секрета (клетки кластера 3), что указывает на функциональную стабильность секреторного цикла концевых отделов исследуемой железы. Анализ главных компонент позволил установить приоритетность морфометрических признаков внутридольковых проток. Установлено, что наиболее весомым является площадь просвета гранулярных и исчерченных проток, менее важна высота эпителиоцитов этих проток, а наименьшее значение имеют высота эпителиоцитов и площадь просвета вставочных проток. Использование кластерного анализа и анализа главных компонент позволяет более полно оценить состояние паренхимы слюнных желез с позиции функциональной морфологии.
    Ключевые слова серомукоциты, внтридольковые протоки, морфометрия, кластерный анализ, анализ главных компонент
    Список цитируемой литературы
    • Gubina-Vakulik G. I. Morfologicheskie osobennosti podnizhnecheljustnoj sljunnoj zhelezy krys pri jeksperimental'noj gipokinezii ih materej / G. I. Gubina-Vakulik, Ju. A. Slin'ko, I. I. Sokolova, N. G. Kolousova // Svіt medicini ta bіologії. – 2013. – №2. – C. 26-28.
    • Eroshenko G.A. Analіz znachushhostі koreljacіjnih zv’jazkіv mіzh morfometrichnimi pokaznikami velikih slinnih zaloz shhurіv pіslja stimuljacії / G. A. Єroshenko // Svіt medicini ta bіologії. – 2012. – №2. – C. 94-97.
    • Korol' T. V. Suchasnі ujavlennja pro sekrecіju ta rol' u nіj kal'cіju / T.V. Korol' // Aktual'nі problemi medicini, farmacії ta bіologії bіologії. – 2006. – №2. – C. 65-72.
    • Mozhejko L. A. O geterogennosti jekzokrinnogo otdela podzheludochnoj zhelezy i ego fiziologicheskih rezervah / L. A. Mozhejko // Zhurnal GrGMU. – 2009. – №4. – C. 66-69.
    • Chajkovs'kij Ju. B. Stovburovі klіtini velikih slinnih zaloz / Ju. B. Chajkovs'kij, S. B. Gerashhenko, O. І. Dєl'cova // Svіt medicini ta bіologії. – 2012. – №2. – C. 200-203.
    • Ali Z. H. Histomorphometric analysis of the postnatal development and growth of rat submandibular glands in offsprings of diabetic mothers / Z. H. Ali, R. Mubarak // Journal of American Science. – 2012. – Vol.8, №1. – P. 342-349.
    • Carpenter G. H. Secretion of IgA by rat parotid and submandibular cells in response to autonomimetic stimulation in vitro / G. H. Carpenter, G. B. Proctor // International Immunopharmacology. – 2004. – Vol.4, №8. – P. 1005-1014.
    • Caldeira E. J. Stereology and ultrastructure of the salivary glands of diabetic Nod mice submitted to long-term insulin treatment. / E. J. Caldeira // The anatomical record. Part A, Discoveries in molecular, cellular, and evolutionary biology. – 2005. – Vol.286, №2. – P. 930-937.
    • Haldar P. Cluster analysis and clinical asthma phenotypes. / P. Haldar, Ian D. Pavord, D. E. Shaw [et al.] // American journal of respiratory and critical care medicine. – 2008. – Vol.178, №3. – P. 218-224.
    • Man Y. G. Contributions of intercalated duct cells to the normal parenchyma of submandibular glands of adult rats. / Y. G. Man, W. D. Ball, L. Marchetti, a R. Hand // The Anatomical record. – 2001. – Vol.263, №2. – P. 202-14.
    • Noorafshan A. Volume-weighted mean volume of the submandibular gland acini in male and female diabetic rats / A. Noorafshan // Micro. – 2006. – Vol.37, №7. – P. 613-616.
    • Peres-Neto P. R. How many principal components? stopping rules for determining the number of non-trivial axes revisited / P. R. Peres-Neto, D. a. Jackson, K. M. Somers // Computational Statistics & Data Analysis. – 2005. – Vol.49, №4. – P. 974-997.
    • Roussa E. Distribution of V-ATPase in rat salivary glands / E. Roussa, F. Thévenod // Eur.J.Morpho. – 1998. – №36. – P. 147-152.
    • Salivary acinar cells from aquaporin 5-deficient mice have decreased membrane water permeability and altered cell volume regulation. / C. M. Krane, J. E. Melvin, H. V. Nguyen [et al.] // The Journal of biological chemistry. – 2001. – Vol.276, №26. – P. 23413-20.
    • Schneider C. A. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis / C. A. Schneider, W. S. Rasband, K. W. Eliceiri // Nature Methods. – 2012. – Vol.9, №7. – P. 671-675.
    Публикация статьи «Мир Медицины и Биологии» №1(48), 2015 год, 138-142 страницы, код УДК 616-002.16+616.316+616-092.9+616-036.8