EnglishУкраїнська
  • Головна
  • Корисні посилання
  • Про журнал
  • Авторам
  • Редакційна колегія

  • Стаття
    Т. Л. Котик

    МОРФОМЕТРИЧНИЙ АНАЛІЗ ПАРЕНХІМИ ПІДНИЖНЬОЩЕЛЕПНОЇ ЗАЛОЗИ ІНТАКТНИХ ЩУРІВ З ВИКОРИСТАННЯМ МЕТОДІВ БАГАТОВИМІРНОЇ СТАТИСТИКИ


    Про автора: Т. Л. Котик
    Рубрика ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНА МЕДИЦИНА
    Тип статті Наукова стаття
    Анотація З використанням морфометрії та методів багатовимірної статистики, досліджені серомукоцити і вивідні протоки піднижньощелепної залози інтактних щурів. За допомогою кластерного аналізу виділено три кластери клітин кінцевих відділів, які характеризують відповідні фази секреторного циклу. Встановлено, що серомукоцити, метричні параметри яких змінюються впродовж секреторного циклу, переміщуються з кластера в кластер: з кластера 1 в 2-й – при нагромадженні певної кількості первинних продуктів; з кластера 2 в 3-й – після утворення достатньої кількості секрету внаслідок його синтезу та дозрівання; з кластера 3 в 1-й – після виведення секрету. Ці процеси протікають плавно і паралельно. У той же час, частка клітин, які виділили секрет і поглинають продукти для синтезу секрету (клітини кластера 1), є рівною частці клітин, які готові до його виведення (клітини кластера 3), що вказує на функціональну стабільність секреторного циклу кінцевих відділів досліджуваної залози. Аналіз головних компонент дозволив встановити пріоритетність морфометричних ознак внутрішньочасточкових проток. Встановлено, що найбільш вагомою є площа просвіту гранулярних і посмугованих проток, менш важливою є висота епітеліоцитів цих проток, а найменше значення мають висота епітеліоцитів і площа просвіту вставних проток. Використання кластерного аналізу та аналізу головних компонент дозволяє більш повно оцінити стан паренхіми слинних залоз із позиції функціональної морфології.
    Ключові слова серомукоцити, внутрішньочасточкові протоки, морфометрія, кластерний аналіз, аналіз головних компонент
    Список цитованої літератури
    • Gubina-Vakulik G. I. Morfologicheskie osobennosti podnizhnecheljustnoj sljunnoj zhelezy krys pri jeksperimental'noj gipokinezii ih materej / G. I. Gubina-Vakulik, Ju. A. Slin'ko, I. I. Sokolova, N. G. Kolousova // Svіt medicini ta bіologії. – 2013. – №2. – C. 26-28.
    • Eroshenko G.A. Analіz znachushhostі koreljacіjnih zv’jazkіv mіzh morfometrichnimi pokaznikami velikih slinnih zaloz shhurіv pіslja stimuljacії / G. A. Єroshenko // Svіt medicini ta bіologії. – 2012. – №2. – C. 94-97.
    • Korol' T. V. Suchasnі ujavlennja pro sekrecіju ta rol' u nіj kal'cіju / T.V. Korol' // Aktual'nі problemi medicini, farmacії ta bіologії bіologії. – 2006. – №2. – C. 65-72.
    • Mozhejko L. A. O geterogennosti jekzokrinnogo otdela podzheludochnoj zhelezy i ego fiziologicheskih rezervah / L. A. Mozhejko // Zhurnal GrGMU. – 2009. – №4. – C. 66-69.
    • Chajkovs'kij Ju. B. Stovburovі klіtini velikih slinnih zaloz / Ju. B. Chajkovs'kij, S. B. Gerashhenko, O. І. Dєl'cova // Svіt medicini ta bіologії. – 2012. – №2. – C. 200-203.
    • Ali Z. H. Histomorphometric analysis of the postnatal development and growth of rat submandibular glands in offsprings of diabetic mothers / Z. H. Ali, R. Mubarak // Journal of American Science. – 2012. – Vol.8, №1. – P. 342-349.
    • Carpenter G. H. Secretion of IgA by rat parotid and submandibular cells in response to autonomimetic stimulation in vitro / G. H. Carpenter, G. B. Proctor // International Immunopharmacology. – 2004. – Vol.4, №8. – P. 1005-1014.
    • Caldeira E. J. Stereology and ultrastructure of the salivary glands of diabetic Nod mice submitted to long-term insulin treatment. / E. J. Caldeira // The anatomical record. Part A, Discoveries in molecular, cellular, and evolutionary biology. – 2005. – Vol.286, №2. – P. 930-937.
    • Haldar P. Cluster analysis and clinical asthma phenotypes. / P. Haldar, Ian D. Pavord, D. E. Shaw [et al.] // American journal of respiratory and critical care medicine. – 2008. – Vol.178, №3. – P. 218-224.
    • Man Y. G. Contributions of intercalated duct cells to the normal parenchyma of submandibular glands of adult rats. / Y. G. Man, W. D. Ball, L. Marchetti, a R. Hand // The Anatomical record. – 2001. – Vol.263, №2. – P. 202-14.
    • Noorafshan A. Volume-weighted mean volume of the submandibular gland acini in male and female diabetic rats / A. Noorafshan // Micro. – 2006. – Vol.37, №7. – P. 613-616.
    • Peres-Neto P. R. How many principal components? stopping rules for determining the number of non-trivial axes revisited / P. R. Peres-Neto, D. a. Jackson, K. M. Somers // Computational Statistics & Data Analysis. – 2005. – Vol.49, №4. – P. 974-997.
    • Roussa E. Distribution of V-ATPase in rat salivary glands / E. Roussa, F. Thévenod // Eur.J.Morpho. – 1998. – №36. – P. 147-152.
    • Salivary acinar cells from aquaporin 5-deficient mice have decreased membrane water permeability and altered cell volume regulation. / C. M. Krane, J. E. Melvin, H. V. Nguyen [et al.] // The Journal of biological chemistry. – 2001. – Vol.276, №26. – P. 23413-20.
    • Schneider C. A. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis / C. A. Schneider, W. S. Rasband, K. W. Eliceiri // Nature Methods. – 2012. – Vol.9, №7. – P. 671-675.
    Публікація статті «Світ Медицини та Біології» №1(48), 2015 рік , 138-142 сторінки, код УДК 616-002.16+616.316+616-092.9+616-036.8