ОСОБЛИВОСТІ ДЕГРАДАЦІЇ СПОЛУЧНОЇ ТКАНИНИ ПЕЧІНКИ ЩУРІВ  НА РАННІХ ТЕРМІНАХ МОДЕЛЮВАННЯ ХРОНІЧНОГО АЛКОГОЛЬНОГО ГЕПАТИТУ

А. О. Микитенко; О. Є. Акімов; Г. А. Єрошенко

Стаття

Світ Медицини та Біології / №1(75), 2021 / ОСОБЛИВОСТІ ДЕГРАДАЦІЇ СПОЛУЧНОЇ ТКАНИНИ ПЕЧІНКИ ЩУРІВ НА РАННІХ ТЕРМІНАХ МОДЕЛЮВАННЯ ХРОНІЧНОГО АЛКОГОЛЬНОГО ГЕПАТИТУ

А. О. Микитенко, О. Є. Акімов, Г. А. Єрошенко

ОСОБЛИВОСТІ ДЕГРАДАЦІЇ СПОЛУЧНОЇ ТКАНИНИ ПЕЧІНКИ ЩУРІВ НА РАННІХ ТЕРМІНАХ МОДЕЛЮВАННЯ ХРОНІЧНОГО АЛКОГОЛЬНОГО ГЕПАТИТУ

Про автора:	А. О. Микитенко, О. Є. Акімов, Г. А. Єрошенко
Рубрика	ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНА МЕДИЦИНА
Тип статті	Наукова стаття
Анотація	У статті розглядаються особливості деградації сполучної тканини печінки щурів на ранніх стадіях моделювання хронічного алкогольного гепатиту. Моделювання хронічного алкогольного гепатиту призводить до розвитку окисного стресу в тканинах печінки щурів внаслідок зменшення активності антиоксидантних ферментів та збільшення продукування активних форм кисню. В результаті розвитку окисного стресу в печінці щурів на перших етапах моделювання алкогольного гепатиту зменшується концентрація протизапальної гепарин-гепаранової фракції глікозаміногліканів, відбувається накопичення фракцій кератан-дерматану та хондроїтину глікозаміногліканів , процеси деградації волокнистих компонентів сполучної тканини печінки посилюються, а концентрація сульфідного аніона зменшується.
Ключові слова	щури, алкогольний гепатит, сполучна тканина, сульфідний аніон, глікозаміноглікани, L-оксипролін
Список цитованої літератури	Kaidashev IP. Metody klinichnykh ta eksperymentalnykh doslidzhen u medytsyni. Poltava: Polimet, 2003. 319 p. [In Ukrainian]. Stepanov YuM, Didenko VI, Dynnik OB, Konenko IS, Oshmianskaia NYu, Galinsky AA. Asotsiatsiya morfolohichnykh zmin parenkhimy pechinky ta yiyi ryhidnist v umovakh eksperymentalnoho modelyuvannya alkoholnoho ta toksychnoho hepatytu. Journal of the NAMSU. 2017; 23 (3-4): 196-204. [In Ukrainian]. Akimov OYe, Mischenko AV, Kostenko VO. Influence of combined nitrate and fluoride intoxication on connective tissue disorders in rats gastric mucosa. Archives of the Balkan Medical Union. 2019; 54(3):11-15. doi. 10.31688/ABMU.2019.54.3.03. Alyoussef A, Taha M. Antitumor activity of sulforaphane in mice model of skin cancer via blocking sulfatase-2. Exp Dermatol. 2019; 28(1): 28-34. doi: 10.1111/exd.13802. Diesinger T, Buko V, Lautwein A, Dvorsky R, Belonovskaya E, Lukivskaya O et al. Drug targeting CYP2E1 for the treatment of early-stage alcoholic steatohepatitis. PLoS One. 2020; 15(7): e0235990. doi: 10.1371/journal.pone.0235990. Faria-Ramos I, Poças J, Marques C, Santos-Antunes J, Macedo G, Reis CA et al. Heparan Sulfate Glycosaminoglycans: (Un)Expected Allies in Cancer Clinical Management. Biomolecules. 2021; 11(2): 136. doi: 10.3390/biom11020136. Gérard-Monnier D, Erdelmeier I, Régnard K, Moze-Henry N, Yadan JC, Chaudière J. Reactions of 1-Methyl-2-phenylindole with Malondialdehyde and 4-Hydroxyalkenals. Analytical Applications to a Colorimetric Assay of Lipid Peroxidation, Chem. Res. Toxicol. 11(10) (1998) 1176-83. Hong S, Kim Y, Sung J, Lee H, Heo H, Jeong HS et al. Jujube (Ziziphus jujuba Mill.) Protects Hepatocytes against Alcohol-Induced Damage through Nrf2 Activation. Evid Based Complement Alternat Med. 2020; 2020: 6684331. doi: 10.1155/2020/6684331. Read E, Zhu J, Yang G. Disrupted H2S Signaling by Cigarette Smoking and Alcohol Drinking: Evidence from Cellular, Animal, and Clinical Studies. Antioxidants (Basel). 2021 Jan 3; 10(1):49. doi: 10.3390/antiox10010049. Reynolds-Peterson C, Xu J, Zhao N, Cruse C, Yonel B, Trasorras C et al. Heparan Sulfate Structure Affects Autophagy, Lifespan, Responses to Oxidative Stress, and Cell Degeneration in Drosophila parkin Mutants. G3 (Bethesda). 2020 Jan 7; 10(1):129-141. doi: 10.1534/g3.119.400730. Staitieh BS, Egea EE, Fan X, Amah A, Guidot DM. Chronic Alcohol Ingestion Impairs Rat Alveolar Macrophage Phagocytosis via Disruption of RAGE Signaling. Am J Med Sci. 2018; 355(5): 497-505. doi: 10.1016/j.amjms.2017.12.013. Sugahara S, Suzuki M, Kamiya H, Yamamuro M, Semura H, Senga Y, Egawa M, Seike Y. Colorimetric Determination of Sulfide in Microsamples. Anal Sci. 2016; 32(10): 1129-1131. doi: 10.2116/analsci.32.1129. Teschke R. Alcoholic Liver Disease: Alcohol Metabolism, Cascade of Molecular Mechanisms, Cellular Targets, and Clinical Aspects. Biomedicines. 2018; 6(4): 106. doi: 10.3390/biomedicines6040106. Wu J, Yang F, Zhang X, Chen G, Zou J, Yin L et al. Hydrogen sulfide inhibits endoplasmic reticulum stress through the GRP78/mTOR pathway in rat chondrocytes subjected to oxidative stress. Int J Mol Med. 2021 Apr; 47(4):34. doi: 10.3892/ijmm.2021.4867. Zhang W, Rho JH, Roehrl MH, Wang JY. A comprehensive autoantigen-ome of autoimmune liver diseases identified from dermatan sulfate affinity enrichment of liver tissue proteins. BMC Immunol. 2019 Jun 26; 20(1):21. doi: 10.1186/s12865-019-0304-1.
Публікація статті	«Світ Медицини та Біології» №1(75), 2021 рік , 197-200 сторінки, код УДК 616.36-002:599.323.4
DOI	10.26724/2079-8334-2021-1-75-197-200